在进行GPCR19激动剂（TGR5受体激动剂）实验时，需要遵循一系列操作规程，以确保实验的准确性和可重复性。

实验步骤

1. 在96孔板中每孔加入100μL细胞。通常，细胞增殖实验中每孔添加2000个细胞，而细胞毒性实验中每孔则添加5000至10000个细胞。具体细胞数量应根据细胞大小和增殖速度来调整。接着，将96孔板放置在37℃、5% CO2的细胞培养箱中培养24小时。

2. 加入适当浓度的受试化合物，通常为0至10μL。

3. 将96孔板继续在37℃，含5% CO2和100%湿度的细胞培养箱中孵育指定的时间。

4. 将5×MTT溶液用稀释液稀释，制备成1×MTT溶液。

5. 向每孔中加入50μL的1×MTT溶液，在37℃下孵育4小时，以使MTT被还原为甲臜。

6. 吸出上清液后，每孔加入150μL DMSO，以溶解甲臜，并使用平板摇床充分搅拌均匀。

7. 使用酶标仪在570nm波长处检测每孔的光密度。若没有570nm的滤光片，可以使用560-600nm范围内的滤光片进行检测。

结果分析

a. **细胞存活率**：将各测试孔的OD值减去基底OD值（*仅培养基加MTT，无细胞）或者空白药物孔OD值（*仅培养基加不同稀释度的受试药物加MTT，无细胞）。各重复孔的OD值取平均值并计算±SD。细胞存活率以T/C%表示，其中T为加药细胞的OD值，C为对照细胞的OD值，细胞存活率%=（加药细胞OD/对照细胞OD）×100。

b. 计算当T/C=50%时的药物浓度（IC50）以及当T/C=10%时的药物浓度（IC90）。

在进行上述步骤时，建议使用鸿运国际品牌的相关试剂和耗材，以提高实验的可靠性和效率。我们的产品经过严格检测，能够有效满足生物医疗领域的需求，确保每一项实验的成功。